ZAKLJUČNO POROČILO O REZULTATIH OPRAVLJENEGA RAZISKOVALNEGA DELA NA PROJEKTU V OKVIRU CILJNEGA RAZISKOVALNEGA PROGRAMA (CRP) »KONKURENČNOST SLOVENIJE 2006 - 2013« I. Predstavitev osnovnih podatkov raziskovalnega projekta 1. Naziv težišča v okviru CRP:_ Povezovanje ukrepov za doseganje trajnostnega razvoja 2. Šifra projekta: V4-0476 3. Naslov projekta:_ RAZVOJ METODE ZA ANALIZO ODPORNOSTI KMETIJSKIH RASTLIN NA SUŠNI STRES KOT ORODJA V PROCESU ŽLAHTNJENJA 3. Naslov projekta 3.1. Naslov projekta v slovenskem jeziku:_ RAZVOJ METODE ZA ANALIZO ODPORNOSTI KMETIJSKIH RASTLIN NA SUŠNI STRES KOT ORODJA V PROCESU ŽLAHTNJENJA 3.2. Naslov projekta v angleškem jeziku:_ DEVELOPMENT OF A METHOD FOR ANALYSIS OF AGRICULTURAL PLANTS TO DROUGHT STRESS AS A TOOL IN A BREEDING PROCESS 4. Ključne besede projekta 4.1. Ključne besede projekta v slovenskem jeziku:_ hmelj, fižol, podnebne spremembe, suša, analiza dednine, selekcijske metode, žlahtnjenje 4.2. Ključne besede projekta v angleškem jeziku:_ hop, bean, climatic changes, drought, germplasm analysis, selection methods, breeding Obrazec ARRS-RPROJ-CRP-KS-ZP-2010 Stran 1 od 8 5. Naziv nosilne raziskovalne organizacije: Inštitut ta hmeljarstvo in pivovarstvo Slovenije 5.1. Seznam sodelujočih raziskovalnih organizacij (RO): Kmetijski inštitut Slovenije Inštitut za fizikalno biologijo d.o.o. 6. Sofinancer/sofinancerji: ARRS MKGP 7. Šifra ter ime in priimek vodje projekta: 18828 Andreja Čerenak Datum: 28.10.2010 Podpis vodje projekta: dr. Andreja Čerenak Podpis in žig izvajalca: Martina Zupančič, _univ.dipl.ing.agr. Obrazec ARRS-RPROJ-CRP-KS-ZP-2010 Stran 2 od 8 II. Vsebinska struktura zaključnega poročila o rezultatih raziskovalnega projekta v okviru CRP 1. Cilji projekta: 1.1. Ali so bili cilji projekta doseženi? KI a) v celoti □ b) delno □ c) ne Če b) in c), _ je potrebna utemeljitev._ V projektu smo si zadali 3 osnovne cilje in sicer: 1. Pri hmelju in fižolu proučiti najbolj primerno izpeljavo lončnega poskusa, s katerim se lahko objektivno spremlja vpliv sušnih razmer na rastline tolerantnih in občutljivih sort, upoštevajoč pravilno izbiro vseh abiotskih parametrov za vzorčenja za molekulske analize (substrat). 2. Prvič vpeljati več fizioloških merjenj rastlin, ki bodo omogočale razvoj selekcijske metode, povezane s tolerantnostjo na sušo tako pri enoletnih rastlinah (na primeru navadnega fižola) in trajnici (primer hmelja). 3. Z molekulskimi analizami listov in korenin določiti sekvence, povezane z občutljivostjo/tolerantnostjo na sušo in poskušati določiti gene, povezane z izražanjem suše pri rastlinah fižola in hmelja. Vse zastavljene cilje smo uspešno izpolnili._ 1.2. Ali so se cilji projekta med raziskavo spremenili? □ a) da |£| b) ne Če so se, je potrebna utemeljitev:_ Obrazec ARRS-RPROJ-CRP-KS-ZP-2010 Stran 3 od 8 2. Vsebinsko poročilo o realizaciji predloženega programa dela1: Poročilo o relizaciji programa dela je opisano v Prilogi 1. 1 Potrebno je napisati vsebinsko raziskovalno poročilo, kjer mora biti na kratko predstavljen program dela z raziskovalno hipotezo in metodološko-teoretičen opis raziskovanja pri njenem preverjanju ali zavračanju vključno s pridobljenimi rezultati projekta. Obrazec ARRS-RPROJ-CRP-KS-ZP-2010 Stran 4 od 8 3. Izkoriščanje dobljenih rezultatov: 3.1. Kakšen je potencialni pomen2 rezultatov vašega raziskovalnega projekta za: I | a) odkritje novih znanstvenih spoznanj; 1X1 b) izpopolnitev oziroma razširitev metodološkega instrumentarija; c) razvoj svojega temeljnega raziskovanja; d) razvoj drugih temeljnih znanosti; e) razvoj novih tehnologij in drugih razvojnih raziskav. 3.2. Označite s katerimi družbeno-ekonomskimi cilji (po metodologiji OECD-ja) sovpadajo rezultati vašega raziskovalnega projekta: a) razvoj kmetijstva, gozdarstva in ribolova - Vključuje RR, ki je v osnovi namenjen razvoju in podpori teh dejavnosti; b) pospeševanje industrijskega razvoja - vključuje RR, ki v osnovi podpira razvoj industrije, vključno s proizvodnjo, gradbeništvom, prodajo na debelo in drobno, restavracijami in hoteli, bančništvom, zavarovalnicami in drugimi gospodarskimi dejavnostmi; c) proizvodnja in racionalna izraba energije - vključuje RR-dejavnosti, ki so v funkciji dobave, proizvodnje, hranjenja in distribucije vseh oblik energije. V to skupino je treba vključiti tudi RR vodnih virov in nuklearne energije; d) razvoj infrastrukture - Ta skupina vključuje dve podskupini: • transport in telekomunikacije - Vključen je RR, ki je usmerjen v izboljšavo in povečanje varnosti prometnih sistemov, vključno z varnostjo v prometu; • prostorsko planiranje mest in podeželja - Vključen je RR, ki se nanaša na skupno načrtovanje mest in podeželja, boljše pogoje bivanja in izboljšave v okolju; e) nadzor in skrb za okolje - Vključuje RR, ki je usmerjen v ohranjevanje fizičnega okolja. Zajema onesnaževanje zraka, voda, zemlje in spodnjih slojev, onesnaženje zaradi hrupa, odlaganja trdnih odpadkov in sevanja. Razdeljen je v dve skupini: f) zdravstveno varstvo (z izjemo onesnaževanja) - Vključuje RR - programe, ki so usmerjeni v varstvo in izboljšanje človekovega zdravja; g) družbeni razvoj in storitve - Vključuje RR, ki se nanaša na družbene in kulturne probleme; h) splošni napredek znanja - Ta skupina zajema RR, ki prispeva k splošnemu napredku znanja in ga ne moremo pripisati določenim ciljem; i) obramba - Vključuje RR, ki se v osnovi izvaja v vojaške namene, ne glede na njegovo vsebino, ali na možnost posredne civilne uporabe. Vključuje tudi varstvo (obrambo) pred naravnimi nesrečami. 2 Označite lahko več odgovorov. Obrazec ARRS-RPROJ-CRP-KS-ZP-2010 Stran 5 od 8 3.3. Kateri so neposredni rezultati vašega raziskovalnega projekta glede na zgoraj označen potencialni pomen in razvojne cilje?_ Predlagani projekt je s sodobnimi fiziološkimi in genetskimi pristopi podprl klasične žlahtniteljske metode. Rezultati projekta so neposredno uporabni v žlahtnjenju hmelja in fižola, saj smo analizirali najpomembnejše slovenske sorte obeh rastlin, ki bodo kot starševske komponente z znano tolerantnostjo na sušo vstopale v program vzgoje novih sort. Izpostavljena metodika - uporaba TRAP testa je prva uporabljena metoda za določanje tolerantnosti na sušni stres pri nas in bo lahko aplicirana tudi na druge kmetijske rastline. Rezultati projekta bodo omogočali večjo konkurenčnost slovenskega hmeljarstva in pridelave fižola v Sloveniji, z optimizacijo metode pa so rezultati uporabni tudi pri izboru sort drugih kmetijskih rastlin - vse to bo doprineslo k svetovanju pri izboru sortne strukture v slov. kmetijstvu. Fiziološke in molekulske analize so pri hmečlju prve v svetu, dopolnjujejo pa tudi raziskave na fižolu. Pričakovani rezultati prispevajo k uresničevanju ciljev razpisa CRP KS._ 3.4. Kakšni so lahko dolgoročni rezultati vašega raziskovalnega projekta glede na zgoraj označen potencialni pomen in razvojne cilje?_ Rezultati projekta so dolgoročno zasnovani, saj bodo omogočili raziskovalcem v Sloveniji in izven (z objavo SCI člankov) uporabo selekcijskih metod, povezanih s tolerantnostjo na sušo. Dolgoročno bodo rezultati pridelovalcem na rizičnih območjih Slovenije omogočali saditi sorte, tolerantnejše na sušo in hkrati vzgojene v naših rastnih razmerah, ter s tem bodo s tem dvignili svojo konkurenčnost. Rezultati imajo tudi širši učinek, saj niso uporabni samo v hmeljarstvu in pridelavi fižola, ampak tudi v ostalih panogah poljedelstva in vrtnarstva, kjer z zadnjem času prihaja do nastanka večjih škod zaradi klimatskih sprememb. Sofinancerji bodo pridelovalcem lahko svetovali, katere sorte so primerne za saditev v spremenljivih podnebnih razmerah._ 3.5. Kje obstaja verjetnost, da bodo vaša znanstvena spoznanja deležna zaznavnega odziva? XI a) v domačih znanstvenih krogih; XI b) v mednarodnih znanstvenih krogih; c) pri domačih uporabnikih; d) pri mednarodnih uporabnikih. 3.6. Kdo (poleg sofinancerjev) že izraža interes po vaših spoznanjih oziroma rezultatih? Interes po rezultatih se izraža pri domačih pridelovalcih kmetijskih rastlin, zlasti hmeljarjih in pridelovalcih fižola, v strokovnih krogih in semenarskih hišah ter tujih znanstvenih inštitucijah (Bayer. Landesanstalt fuer Landwirtschaft, Institut fuer Pflanzenbau und Pflanzenzuechtung, Arbeitsbereich Hopfen, Hüll, Freising, Deutschland; Wye Hops Ltd., England)._ Obrazec ARRS-RPROJ-CRP-KS-ZP-2010 Stran 6 od 8 3.7. Število diplomantov, magistrov in doktorjev, ki so zaključili študij z vključenostjo v raziskovalni projekt?_ Ena mlada raziskovalka je bila vključena v raziskovalni projekt. 4. Sodelovanje z tujimi partnerji: 4.1. Navedite število in obliko formalnega raziskovalnega sodelovanja s tujimi raziskovalnimi inštitucijami._ Sodelovanja: - Horticulture Research International, Department of Hop Research, Wye College, Wye Ashford, Kent, England - Hop Research Institute co., Žatec, Czech Republic - Bayer. Landesanstalt fuer Landwirtschaft, Institut fuer Pflanzenbau und Pflanzenzuechtung, Arbeitsbereich Hopfen, Hüll, Freising, Deutschland - Oregon State University, Botany and Plant Pathology, Corvallis, Oregon, USA - Institute of Soil Science and Plant Cutivation, Pulawy, Poland - Tasmania Institute of Agricultural Research, University of Tasmania, Australia 4.2. Kakšni so rezultati tovrstnega sodelovanja?_ Rezultati tovrstnega sodelovanja temeljijo na izmenjavi materiala in izkušenj s kolegi iz tujine, predvsem na področju hmeljarskih in agronomskih tem ter povezovanju za nadaljnje prijave na EU projekte. 5. Bibliografski rezultati3 : Za vodjo projekta in ostale raziskovalce v projektni skupini priložite bibliografske izpise za obdobje zadnjih treh let iz COBISS-a) oz. za medicinske vede iz Inštituta za biomedicinsko informatiko. Na bibliografskih izpisih označite tista dela, ki so nastala v okviru pričujočega projekta. 3 Bibliografijo raziskovalcev si lahko natisnete sami iz spletne strani:http:/www.izum.si/ Obrazec ARRS-RPROJ-CRP-KS-ZP-2010 Stran 7 od 8 6. Druge reference4 vodje projekta in ostalih raziskovalcev, ki izhajajo iz raziskovalnega projekta:_ Delni rezultati projekta so bili predstavljeni zainteresirani javnosti na združenem kongresu Slovenskega biokemičnega in genetskega društva z mednarodno udeležbo (Otočec, September 20-23, 2009), na 47. seminarju o hmeljarstvu z mednarodno udeležbo, ki se je odvijal 4. in 5. 2. 2010 v Portorožu. Rezultati so bili predstavljeni tudi na tehnološkem sestanku hmeljarjev, ki je bil 11. 8. 2010 na Inštitutu za hmeljrarstvo in pivovarstvo Slovenije. Rezultati projekta so bili predstavljeni tudi na 5. Slovenskem simpoziju rastlinske biologije v Ljubljani, sept. 2010. 4 Navedite tudi druge raziskovalne rezultate iz obdobja financiranja vašega projekta, ki niso zajeti v bibliografske izpise, zlasti pa tiste, ki se nanašajo na prenos znanja in tehnologije. Navedite tudi podatke o vseh javnih in drugih predstavitvah projekta in njegovih rezultatov vključno s predstavitvami, ki so bile organizirane izključno za naročnika/naročnike projekta. Obrazec ARRS-RPROJ-CRP-KS-ZP-2010 Stran 8 od 8 PRILOGA 1: Vsebinsko raziskovalno poročilo - program dela z raziskovalno hipotezo, metodološko teoretičen opis raziskovanja, vključno z rezultati: 1 UVOD Zaradi spremenjenih klimatskih razmer so napovedane omejene zaloge virov namakanja, zato je nujna vzgoja sort kmetijskih rastlin, odpornih na sušo. Ponavljajoča se sušna leta izrazito vplivajo na rast in razvoj kmetijskih rastlin, kar se seveda odraža v ekstremno nizki količini in kvaliteti pridelka, modelne študije pa nakazujejo še slabšo razporejenost padavin in višje temperature v prihodnjih letih (Kajfež-Bogataj s sod., 2003). V zadnjih 25 letih se v poprečju vsako tretje leto pojavi ekstremno sušno leto (Matičič s sod., 2000). Pri hmelju (Humulus lupulus L.), ki se prideluje v trajnih nasadih, se posledice sušnih let odražajo še v naslednjih letih, kar pomeni večletna ekonomska tveganja. Relativno veliko vode v času rasti, ki naj bi bila čim bolj enakomerno porazdeljena, potrebuje hmelj zato, ker v kratkem času razvije veliko rastlinske mase. Hmelj raste v RS na približno 1500 ha, hmeljišča so locirana v Savinjski dolini, na Koroškem in na Ptujsko - Ormoškem območju. Zagotavljanje stalne oskrbe s hmeljem ustrezne kakovosti pa po drugi strani pomeni stalen položaj slovenskega hmeljarstva na svetovnem trgu. Razlike med sortami hmelja na odzivnost na sušne razmere so izkustveno znane. O vplivu vremenskih razmer na rast in pridelek Savinjskega goldinga je nekaj objav (Kralj, 1962; Majer, 1997). Ravno tako kaže sorta Aurora, ki pokriva dve tretjini vseh hmeljišč v Sloveniji, izredno dobro plastičnost genotipa ob različnih okoljskih razmerah. Navadni fižol (Phaseolus vulgaris L.) je v svetovnem merilu najpomembnejša stročnica. Letna pridelava fižola v stroku in zrnju znaša preko 24 milijonov ton, kar presega polovico svetovne pridelave stročnic, namenjene človekovi prehrani (FAOSTAT). Fižol v prehrani človeka predstavlja pomemben vir proteinov, vitaminov in mineralov. Zaradi visoke vsebnosti proteinov, vključno z esencialnimi aminokislinami, predstavljajo stročnice v evropskem prostoru velik potencial kot nadomestek mesu (Broughton in sod., 2003). Slovenija ima dolgoletno tradicijo pridelovanja fižola. Skozi stoletja kontinuirane pridelave so se v Sloveniji razvile številne avtohtone populacije in sorte fižola, prilagojene lokalnim razmeram (Šuštar-Vozlič in sod., 2000). Čeprav so se površine, namenjene pridelavi fižola, v preteklih desetletjih precej zmanjšale, lahko na marsikateri slovenski kmetiji še vedno najdemo stare domače tradicionalne genske vire. Suša pomeni za rastlino stres, ki pomeni zmanjšanje njene odpornosti tudi za napade bolezni in škodljivcev. Odzivnost organizma na stres variira glede na genetsko zasnovo, starost, stopnjo adaptacije in sezonsko oz. dnevno aktivnost organizma (Larcher, 1995). Pri hmelju je bilo v preteklosti v svetu in pri nas že nekaj raziskav o vplivu pomanjkanja vode na rastline hmelja, novejših objav pa ni. Kljub temu, da v številnih državah žlahtniteljicah hmelja potekajo intenzivni programi vzgoje novih sort pa še ni razvite metode za določanje tolerantnosti hmelja na sušne razmere. Navadni fižol sodi med vrste, ki slabo prenašajo sušni stres. Posledice delovanja sušnega stresa na fižol se izražajo v odpadanju cvetov in strokov, zmanjšanem številu strokov in semena, masi posameznega semena, žetvenem indeksu in pridelku (do 90%) (Nunez in sod., 2005). Sušni stres ovira preskrbo rastline s fosforjem (Guida dos Santos in sod., 2004), zmanjšuje fiksacijsko posobnost ter vsebnost rastlin z dušikom (Serraj in Sinclair, 1998). V sušnih razmerah se koreninski sistem fižola krči, s čimer se zmanjša stična površina med koreninami in talnimi delci (North in Nobel, 1997). Izsledki raziskav odpornosti skupine genotipov navadnega fižola, opravljenih v več državah v 80-ih letih prejšnjega stoletja (White, 1987), nakazujejo na pomembno vlogo lokalne prilagojenosti genotipov navadnega fižola pri odpornosti na sušo. Stopnjo oz. učinek stresa lahko ugotavljamo tako, da merimo specifične stresne simptome ali pa nespecifične, kot so sprememba encimske aktivnosti, akumulacija osmotikov, prisotnost stresnih hormonov, inhibicija dihanja in fotosinteze, zavrta rast rastlin, ... Dodaten problem pa predstavlja dejstvo, da sušni stres v rastlinah privede do postopnega pešanja celičnih antioksidativnih obrambnih sistemov in posledičnega kopičenja reaktivnih kisikovih spojin (ROS), ki so delno reducirane oblike atmosferskega kisika. V tem primeru govorimo, da je rastlina v stanju oksidativnega stresa. O oksidativnem stresu govorimo, ko se v organizmu poruši ravnotežje med ROS in antioksidanti. Kadar organizem ni pod stresom, so antioksidativni obrambni sistemi dovolj učinkoviti, da obdržijo količino ROS na neškodljivi ravni in popravijo celične poškodbe. Kadar pa zaradi vnosa eksogenih snovi nastanejo dodatne rOs, se v celici inducirajo dodatni obrambni sistemi - oksidativni stresni odgovor. Glavne posledice delovanja ROS so oksidacije membranskih lipidov, proteinov, nukleinskih kislin in spremenjeno redoks stanje v celici. V organizmu pride zaradi radikalov do poškodb tkiva in prezgodnje senescence (Mittler, 2002). Sušni stres lahko učinkovito ocenimo tako, da merimo oksidativne stresne simptome, kot so spremembe aktivnosti antioksidativnih encimov, zavrta rast rastlin, redoks stanje in koncentracija glutationa, inhibicija fotosinteze (Razinger in sod., 2007a), lahko pa tudi z nespecifičnimi metodami, s katerimi zajamemo več prej omenjenih parametrov in tako dobimo celostno sliko o fiziološkemu stanju rastlin (Razinger in sod., 2007b). Primer take nespecifične metode je TRAP test (TRAP - total radical-trapping potential). Namen TRAP testa je ocena odpornosti sistema na oksidativni stres, oziroma določanje celokupne antioksidativne aktivnosti preiskovanega vzorca. Test temelji na znižanju kemiluminiscence, kar je povezano s koncentracijo in antioksidativno aktivnostjo vzorca (Baker in Mock, 2004). Test je odziven in relevanten, saj sušni stres privede do oksidativnega stresa. Za ugotavljanje stresne situacije v rastlini se uporabljajo tudi metode merjenja intenzivnosti absorpcije svetlobe (Steven s sod., 1990). Kot uporabne metode za merjenje stresa se uporabljajo spektralne metode, kjer se meri odzivnost rastlin na različne strese in metoda merjenja fluorescence klorofila v stresnih situacijah (Lichenthaler, 1990). S tehniko PAM (pulse amplitude modulated) fluorometrije lahko določamo različne fotosintetske parametre: učinkovitost fotosistema II, hitrost elektronskega transporta, fotokemično dušenje in nefotokemično dušenje (Oquist in Wass, 1988). Zaznavanje stresa rastlin opravljamo tudi z reflektometrijo, saj je različen odboj posameznih valovnih dolžin svetlobe pri rastlinah poznan že vrsto let. Povišana reflektivnost v rdečem delu spektra pomeni manjšo fotosintetsko aktivnost, znižana reflektivnost v bližnjem IR pa vodni stres (Gitelson in sod., 2003). Vegetacijski indeksi so spektralne transformacije dveh ali več pasovnih širin spektra odbite svetlobe s površine vegetacije (Deering, 1987). Omogočajo nam monitoring sezonskih, letnih in večletnih fizioloških, strukturnih, fenoloških in biofizikalnih parametrov vegetacije. Vzorec ukoreninjenja, še posebej dolžina korenin, je pomemben dejavnik, ki vpliva na dovzetnost na vodni stres (Sponchiado in sod., 1989). Z razvojem novih orodij molekulske biologije so se pojavili tudi pristopi, ki omogočajo proučevanje odzivnosti rastlin na stres na ravni celice. Ena takih naprednih metod je diferenčni prikaz (differential display). Metoda omogoča identifikacijo genskih sekvenc, odgovornih za specifično reakcijo rastlin na sušni stres. Merjenje ravni izražanja teh istih genskih sekvenc pa omogoča metoda kvantitativnega PCR v realnem času. Z metodo diferencialnega prikaza želimo v predlaganem projektu opredeliti spremembe v transkriptomu koreninskega sistema fižola in hmelja. Poznavanje morfoloških (listi, koreninski sistem), biokemičnih (genska regulacija) in fizioloških mehanizmov odpornosti oziroma občutljivosti rastlin na sušni stres odpira nove možnosti za prilagajanje genfonda rastlin spremenjenim okoljskim razmeram. Zaradi širše možnosti uporabnosti vpeljane metode je bil poskus postavljen pri trajnici (hmelj) in enoletni metuljnici (fižol). Iz omenjenega so bili glavni cilji projekta: 1) določiti vpliv sušnih razmer na pojavljanje stresa pri dveh gospodarsko pomembnih rastlinah (hmelj, fižol), 2) s spremljanjem fizioloških in morfoloških parametrov pri različnh sortah določiti genski potencial obstoječih sort na sušni stres, 3) razviti metodo določanja tolerantnosti kmetijskih rastlin na sušni stres uporabno tudi v drugih žlahtniteljskih programih, 4) poskušati določiti gene, povezane z odpornostjo na sušo v listih in koreninah hmelja in fižola. 2 METODE DELA 2. 1 Lončni poskus V poskus smo vključili sorti hmelja, ki se razlikujeta glede na tolerantnost na sušo v pridelavi hmelja (po izkušnjah), in sicer Auroro kot bolj tolerantno in Savinjski golding kot manj tolerantno oz. občutljivo na sušo. Med sortami fižola smo izbrali Starozagorski čern kot občutljivo na sušo in Tiber ter Bat, sorti odporni na sušo. Rastline hmelja so bile enoletne rastline, vzgojene vegetativno in posajene v 4l loncih; rastline fižola so bile vzgojene iz semena in posajene ravno tako v 4l loncih. V vsakem obravnavanju smo imeli 20 rastlin. Obravnavanja: 1. Aurora - sušne razmere 2. Aurora - kontrola 3. Savinjski golding - sušne razmere 4. Savinjski golding - kontrola 5. Starozagorski čern - sušne razmere 6. Starozagorski čern - kontrola 7. Tiber - sušne razmere 8. Tiber - kontrola Poskus v rastni komori: Substrat (Gramoflor, Nemčija) je vseboval vsa potrebna hranila, za obdobje trajanja poskusa rastlin nismo dodatno dognojevali. Posebej pozorni smo bili na zagotavljanje enake volumske gostote substrata pri vseh rastlinah, s čimer smo zmanjšali napako pri določanju vlage ter natančno spremljanje vlage v različnih obravnavanjih. V prvem letu izvajanja lončnega poskusa so bile rastline izpostavljene kontroliranim rastnim pogojem v rastni komori pod sledečimi pogoji: - Kontrola: Normalna osvetlitev (15000 lux); relativna zračna vlaga 70 %; dolžina dneva 15 ur; temperatura: dnevna: 26°C, no čna: 20°}.; rastline bodo zalivane do ocenjene 70 % poljske kapacitete - Sušne razmere: Normalna osvetlitev (15000 lux); relativna zračna vlaga 70% ob začetku poskusa in 55% v sušnem obdobju; dolžina dneva 15 ur; temperatura dnevna: 26°}, no čna: 20°}.; rastline so bile zalivane do ocenjene 70 % poljske kapacitete - izpostavitev sušnim razmeram - vzdrževanje 35 % poljske kapacitete Rastline smo optimalno preskrbeli z vodo na podlagi meritev s tenziometri in tehtanjem loncev. Vlago v substratu smo pri vsakem obravnavanju spremljali s pomočjo tenziometra in kontrolirali gravimetrično ob vsakem vzorčenju poskusa. Vlago smo spremljali tudi večkrat tedensko s tehtanjem loncev posameznih obravnavanj, s čimer smo lahko ugotovili porabo vode in s tem določili potrebno količino vode za zalivanje. Na ta način smo zagotavljali optimalno preskrbljenost rastlin z vodo. Po izpostavitvi sušnim razmeram smo rastline ponovno začeli zalivati z manjšimi odmerki v krajših presledkih in spremljali različno sposobnost regeneracije sort. Pri rastlinah fižola oz. hmelja smo začeli s ponovnim zalivanjem rastlin glede na to kako so se rastline odzivale na sušo - torej pred propadom rastlin smo pričeli s ponovnim dodajanjem vode. V drugem letu smo poskus postavili v rastlinjaku, da smo se izognili ventilaciji v rastni komori, ki je zelo neenakomerno izsuševala rastline v poskusu. Obravnavanja in število vključenih rastlin v poskus je bilo enako kot pri izvedbi poskusa v rastni komori, s tem da smo dodali še novo sorto fižola Bat, z izkazano tolerantnostjo na sušo (Miklas in sod., 2006). Dodatni obravnavanji: 9. Bat - sušne razmere 10. Bat - kontrola Zagotavljali smo 20-25°C dnevne temperature in no čne IS-IB^C ter dodatno osvetljevanje od 6.00 do 20.00. Uporabili smo substrat vermikulit : pesek v razmerju 1:1. Rastline smo enkrat tedensko dognojevali s tekočim gnojilom Flora Gro, FloraMicro in FloraBloom v sledečih količinah: Preglednica 1: Gnojenje lončnega poskusa v rastlinjaku (v ml/10l raztopine). teden 1 2 3 4 5 6 in več Flora Gro 2,5 2,5 7 15 15 5 FloraMicro 2,5 2,5 7 10 10 10 FloraBloom 2,5 2,5 7 5 5 15 Zaradi slabe kalitve semen fižola smo poskus ponovno ponovili v februarju in nato še aprila, ko smo uporabili komercialno uporabljen substrat. Rastline hmelja smo vzorčili v 3 terminih po izpostavitvi sušnih razmer, in sicer 13. ter 21. dan, nakar smo ponovno začeli z zalivanjem sušnih rastlin - spremljanje sposobnosti regeneracije rastlin. Pri fižolu smo rastline vzorčili v 4. terminih: 7., 12., 17. dan trajanja suše, nakar smo vse sušne rastline začeli ponovno zalivati (regeneracija). Zadnje vzorčenje je bilo izvedeno 20. dan poskusa. 2.2 Merjenje fotosintetske učinkovitosti Meritve fluorescence klorofila so standardna metoda za določanje fiziološkega stanja fotosintetskega aparata rastlin. Meritve smo izvajali s PAM fluorometrom OptiSciences 7 in iz meritev določili sledeče parametre: - FV/Fm: maksimalni kvantni izkoristek fotosistema II (PSII). Zmanjšanje Fv/Fm je posledica poškodb reakcijskega centra PSII - Qp: fotokemično dušenje predstavlja učinkovitost konverzije svetlobne energije pri fotosintezi - Qn: nefotokemično dušenje je mera za stres v fotosintetskem aparatu rastline Meritev fluorescence je potekala po sledečem protokolu: - 10 minut temne adaptacije s posebno sponko - Meritev F0 in Fm. Fv/Fm=(Fm-F0)/Fm - Meritev fluorescenčne kinetike pod aktinično osvetlitvijo: 3 min - Določitev Parametrov Qp in Qn Meritve smo opravili na 3. paru listov pri fižolu in 5. paru pri hmelju. Iz meritev na 5 rastlinah iz istega tretmaja smo izračunali povprečje in standardno deviacijo. 2.3 Merjenje vodnega potenciala z NDVI (normalized difference vegetation index) in WC (water content) Ob vzpostavitvi sušnim razmeram smo pri obravnavanjih določali reflektometrični indeks NDVI v listih. Sušni stres se izkazuje kot postopno zmanjševanje bližne infrardeče reflektivnosti NIR (0.7-1.1 mm) v razmerju z reflektivnostjo v rdečem delu spektra R (0.6-0.7 mm). NDVr = nir-R NIR + R Meritve reflektivnosti smo izvajali točkovno na 3. paru listov pri fižolu in 5. paru pri hmelju. Za meritev reflektivnosti smo uporabili halogensko svetilko, reflektometrično sondo in prenosni VIS-NIR spektrofotometer OceanOptics USB2000. Iz reflektančnih spektrov smo izračunali vrednosti vegetacijskega indeksa NDVI. Delež vode v listih (WC) smo določili na osnovi enačbe: WC = [(FW - DW)/ FW] x 100%, kjer FW predstavlja maso svežega lista, DW pa maso suhega lista. Maso svežega lista smo izmerili ob točki vzorčenja pri vseh obravnavanjih. Svež list smo nato poližili v petrijevko z namočenim filter papirjem, listni pecelj obložili z navlaženo vato, pokrili petrijevko in inkubirali 24 ur pri sobni temperaturi in svetlobi. Lističe smo stehtali (TW - Turgid weight) in jih prenesli v grelno komoro ter inkubirali 24-72 ur pri 70°C te r nato izmerili maso osušenih listov. 2.4 Merjenje morfoloških parametrov rastlin - št. nodijev, št. listov, dolžina rastline, dolžina koreninskega sistema, teža koreninskega sistema Delu rastlin vsakega obravnavanja smo pred izpostavitvi sušnim razmeram izmerili dolžino stebla, št. nodijev, št. listov, ter ob vzorčenjih določili še dolžino in težo koreninskega sistema. 2.5 Določanje celokupne antioksidativne aktivnosti - TRAP test Test temelji na kemiluminiscenčnemu signalu, jakost oz. stopnjo antioksidativne aktivnosti preiskovanega vzorca smo določili iz dušenja kemiluminiscenčnega signala, ki je posledica lovljenja luminol radikalov in vodikovega peroksida. Pri vsaki točki meritve smo odvzeli po 3 vzorce na 5. listu od rastnega vršička navzdol. Vzorček smo stehtali, v terilnico dodali kalij-fosfatni pufer in strli 100 mg rastlinskega tkiva s pomočjo kovinskih kroglic ter naprave Smart Helix Cell Deisntegrator (IFB d.o.o., Slovenia). Epice s homogenizatom smo centrifugirali in supernatant dali v ultra-zamrzovalnik na -80°C do m eritev TRAP vrednosti. Kemiluminiscenco smo merili na Luminoskan Ascent luminometru (Thermo Electron Corp) (Razinger in sod., 2008). 2.6 Določanje ekspresije genov v koreninah in listih hmelja in fižola z metodo diferencialnega prikaza V raziskave smo vključili dva kultivarja hmelja, Auroro in Savinjski golding ter dva kulitvarja fižola, Starizagorski in Tiber. Ob pojavu simptomov venenja pri rastlinah, podvrženih sušnemu stresu, smo iz obeh obravnavanj (kontrola, suša) odvzeli dele listnega in koreninskega tkiva. Za pripravo izolacije nukleinskih kislin smo praviloma vzorčili peti list (šteto od spodaj navzgor) (za hmelj) oziroma tretji list (za fižol), prav tako smo vzorčili tudi korenine. Liste in korenine smo takoj po vzorčenju potopili v tekoči dušik in jih do izolacije shranili na -70°. Izolacija RNA Za izolacijo RNA smo preizkušali zelo veliko metod in komercialnih kitov. Pomemben del so predstavljali poskusi odstranjevanja DNA iz vzorcev RNA. Primerjalne meritve smo izvajali na nanodropu, Qubit-u in Agilent bionalizatorju. Največ in najboljšo RNA iz rastlinskega tkiva smo pridobili s SIGMA Spectrum Plant Total RNA Kitom. Postopek izolacije RNA, ki smo ga nato uporabili pri vseh vzorcih hmelja, je potekal po naslednjem protokolu: rastlinsko tkivo smo strli v terilnici na suhem ledu ob dodatku tekočega dušika. 100 mg tkiva smo prenesli v 2 ml mikrocentrifugirko, ki je bila ohlajena na suhem ledu. Dodali smo 500 ^l Lysis razstopine, ki je vsebovala 2-merkaptoetanol ter vzorce stresali najmanj 30 s. Sledila je inkubacija pri 56 °C za 5 min. Po centrifugiranju pri maksimalni hitrosti 3 min smo supernatant prenesli v kolone po navodilih proizvajalca in postopek večkrat ponovili. Izolirano RNA smo raztopili v 50 ^l elucijske raztopine in jo shranili v zamrzovalniku na -80